Western實(shí)驗(yàn)中，經(jīng)過(guò)SDS-PAGE電泳分離后的蛋白質(zhì)樣品需經(jīng)過(guò)“轉(zhuǎn)膜”步驟，從PAGE膠轉(zhuǎn)移到膜上固定，才能用各種方法進(jìn)行Western Blot的檢測(cè)和顯示，而且為了防止沒(méi)有電場(chǎng)的情況下已經(jīng)分離的蛋白條帶擴(kuò)散，轉(zhuǎn)膜要盡快進(jìn)行。轉(zhuǎn)膜是對(duì)Westernzui終結(jié)果影響zui大的一步，轉(zhuǎn)膜質(zhì)量的好壞直接決定了實(shí)驗(yàn)結(jié)果的好壞。下面介紹一些實(shí)用技巧，趕緊Get起來(lái)吧。
 

膜的選擇主要從實(shí)驗(yàn)?zāi)康暮蛯?shí)驗(yàn)要求來(lái)考慮，例如做分子量小于20kDa的小蛋白，0.45um的膜是不可取的，因?yàn)榭赡軙?huì)使得蛋白因透過(guò)膜孔而造成膜結(jié)合的目的蛋白含量不確定，從而影響zui終結(jié)果的可靠性。通常小于20KDa的蛋白選擇0.2um的膜，而大于20KDa的蛋白選擇0.45um的膜。常見(jiàn)的膜有NC膜和PVDF膜，區(qū)別如下：

不同分子量的蛋白質(zhì)選擇的凝膠濃度和轉(zhuǎn)膜時(shí)間也是不同的，原則上高分子量蛋白用低濃度膠，轉(zhuǎn)膜時(shí)間較長(zhǎng)，而低分子量蛋白用高濃度膠分離，采用較短的轉(zhuǎn)膜時(shí)間，下表可供參考：

3. 轉(zhuǎn)膜操作注意事項(xiàng)

（1） 避免直接接觸膜，全程戴手套并使用鑷子，手指上的油脂與蛋白會(huì)封閉轉(zhuǎn)膜效率并易產(chǎn)生背景污斑；

（2） PVDF膜具有疏水性，使用之前需用甲醇浸泡；

（3） 排列三明治時(shí)，盡量用干凈的玻璃棒或試管趕走膠和膜之間的氣泡，避免轉(zhuǎn)膜不均勻；

（4） 確認(rèn)裁剪的膜和濾紙與凝膠尺寸相同，否則會(huì)導(dǎo)致電流不能通過(guò)膜，從而轉(zhuǎn)膜無(wú)效；

（5） 雞來(lái)源的抗體與PVDF和尼龍膜有較強(qiáng)的結(jié)合能力，從而產(chǎn)生較高背景，故如果選擇雞來(lái)源的抗體，使用硝酸纖維素膜（NC膜）。

為檢測(cè)轉(zhuǎn)膜是否成功，可以用麗春紅進(jìn)行染色，將膜放入TBST洗一次，然后置于麗春紅染色工作液中，室溫下?lián)u動(dòng)染色5分鐘，大量的水洗膜，直至水變清無(wú)色，蛋白條帶清晰。