一些常見的樣本的處理是科研實驗中zui基本的,相信很多科研工作者都是了解和清楚的,但是植物組織樣本該怎樣處理,相信很多科研朋友就是一頭霧水,但是沒有關系,上海滬鼎帶您從專業的角度來了解植物組織樣本的處理方法.
一、勻漿介質
一般采用0.05 mol/L Tris-HCl, pH 7.4 磷酸鹽緩沖液(PBS),客戶可根據樣本及測定指標的情況自行設定濃度,目的是保持樣本的等滲環境。
二、組織勻漿的制備
1、取組織塊（0.2g～0.5g）zui少可到5～10mg在冰冷的PBS中漂洗，濾紙拭干，準確稱重，放入5ml的勻漿管中。
2、按重量(g):體積(ml)=1:4的比例加入4倍體積的勻漿介質于勻漿管中，冰水浴條件下,用眼科小剪盡快剪碎組織塊。
3、勻漿的方式：手工勻漿，機器勻漿。
① 手工勻漿：左手持勻漿管將下端插入盛有冰水混合物的器皿中，右手將搗桿垂直插入套管中，上下轉動研磨數十次（6～8分鐘），充分研碎，制成20%的勻漿液。
② 機器勻漿：用組織搗碎機10000～15000 轉/分 上下研磨制成20%組織勻漿，也可用內切式組織勻漿機制備（勻漿時間10秒/次，間隙30秒，連續3～5次，在冰水中進行,可適當延長勻漿時間），
鏡檢觀察:取少量組織勻漿作涂片（直接涂片、染色均可以），顯微鏡下觀察細胞是否破碎，若沒有則可延長勻漿時間。
4、將制備好的20%勻漿液用普通離心機或低溫低速離心機4000轉/分左右,離心10～15分鐘，取上清液進行測定.
三、樣本保存:
   植物組織樣本暫時不測定，可立即低溫凍存，溫度越低越好，中間如*凍融，-20℃以下可保存三個月,-70℃以下可保存六個月。